客户只需提供样品和待检测基因名称即可。由我们提取RNA，设计并合成引物，完成荧光定量PCR实验以及后续数据分析，提供实验报告给您。 产品名称 | 腺病毒E型探针法荧光PCR检测试剂盒 | 英文名称 | Adenovirus(AV) | 货号 | YSP96350 |
荧光定量PCR试剂盒技术：
产品仅用于科研本实用新型技术公开了一种实时荧光定量PCR试剂盒，包括盒体，盒体由上盒体和下盒体组成，上盒体的底面上设有限位凸起，下盒体的顶面上设有与限位凸起匹配的凹槽，且在下盒体左右侧壁的下端均软连接有侧盖，侧盖远离下盒体的一端连接有卡勾，下盒体的上端边缘处设有环形凸起，两个卡勾分别勾住环形凸起的左右两端将上盒体固定在下盒体上；凹槽的内部设有固定杆，固定杆上通过转动件转动连接有用于放置试管的试管架；下盒体的左右两侧均设置有收纳槽。本实用新型技术通过将盒体分为上下组合的两个部分，并将两个部分通过侧盖连接，即可保证试剂盒的便携性，同时使用试剂盒自带的试管可提高检测的效率。
样品RNA的抽提：
①取冻存已裂解的细胞，室温放置5分钟使其*溶解。
②两相分离 每1ml的TRIZOL试剂裂解的样品中加入0.2ml的，盖紧管盖。手动剧烈振荡管体15秒后，15到30℃孵育2到3分钟。4℃下12000rpm离心15分钟。离心后混合液体将分为下层的红色酚相，中间层以及无色水相上层。RNA全部被分配于水相中。水相上层的体积大约是匀浆时加入的TRIZOL试剂的60%。③RNA沉淀 将水相上层转移到一干净无RNA酶的离心管中。加等体积异丙醇混合以沉淀其中的RNA，混匀后15到30℃孵育10分钟后，于4℃下12000rpm 离心10分钟。此时离心前不可见的RNA沉淀将在管底部和侧壁上形成胶状沉淀块。
④RNA清洗 移去上清液，每1mlTRIZOL试剂裂解的样品中加入至少1ml的75%乙醇（75%乙醇用DEPCH2O配制），清洗RNA沉淀。混匀后，4℃下7000rpm离心5分钟。
⑤RNA干燥 小心吸去大部分乙醇溶液，使RNA沉淀在室温空气中干燥5-10分钟。
⑥溶解RNA沉淀 溶解RNA时，先加入无RNA酶的水40μl用枪反复吹打几次，使其*溶解，获得的RNA溶液保存于-80℃待用。
2 RNA质量检测
1）紫外吸收法测定
先用稀释用的TE溶液将分光光度计调零。然后取少量RNA溶液用TE稀释（1:100）后，读取其在分光光度计260nm和280nm处的吸收值，测定RNA溶液 浓度和纯度。
① 浓度测定
A260下读值为1表示40 g RNA/ml。样品RNA浓度(g/ml)计算公式为：A260 ×稀释倍数× 40 g/ml。
草酸依地普仑/草酸艾司西酞普兰（标准品）C10H9NO3蔗糖苯甲酸酯 消旋卡多曲C20H20NO42-[(二苯基)硫基]乙酰胺 消旋卡多曲（标准品）C19H16NO4+羟基-甲氧基苯甲 乙酰螺旋霉素C36H60O8氟-羟基苯甲酸 尼罗替尼C6H14N4O2异喹啉-甲酸 尼罗替尼（标准品）C17H16O4N-(2-乙基)邻苯二甲酰亚胺 螺旋霉素C17H18O42-甲氧基-(4,4,5,5-四甲基-1,3,2-二杂氧戊烷-2-基)吡啶 螺旋霉素(标准品)C16H16O6无水三氯化铬 螺内酯C22H28O6溴-2-氟-6-硝苯 螺内酯（标准品）C41H64O13溴甲酯 卡马西平C32H40O8羟基异恶唑-5-甲酸甲酯 卡马西平（标准品）C30H52O4氟-甲氧基苯甲 卡铂C27H38O6苄基溴 卡铂（标准品）C40H58N8O8三苯基铋 硫酸长春新碱/硫酸基长春碱C22H34O75-甲氧基吡啶-2-羧酸 硫酸长春新碱/硫酸基长春碱(标准品)C20H32O6甲基吡啶-酸 帕唑帕尼C22H34O71-Boc-哌啶 非洛地平/非氯地平C20H22N2O2N-羟基-异丁酰胺
腺病毒E型探针法荧光PCR检测试剂盒羟脯氨酸(Hyp)ELISA试剂盒ATF6 活化转录因子6抗体100 ul 前心钠肽(Pro-ANP)ELISA试剂盒ATP4B 氢钾ATP酶通道蛋白抗体1 Kit 前列腺特异性抗原(PSA)ELISA试剂盒ATP5J ATP5J抗体100 ul 前列腺酸性磷酸酶(PAP)ELISA试剂盒ATP7A 铜转运蛋白质α链抗体100 ul G/H合酶1(PTGS1)ELISA试剂盒ATRN 吸引素抗体20 ul F(PGF)ELISA试剂盒phospho-ATR/ACTR(Ser428) 磷酸化ATR抗体10 mg E2合成酶(PGES)ELISA试剂盒ATP7B 铜转运蛋白质β链抗体100 ul E2(PGE2)ELISA试剂盒ATP1b2/Na+K+ATPase 钠钾ATP酶通道蛋白抗体100 ul E1(PGE1)ELISA试剂盒Phospho-Na,K-ATPase alpha-1 (Tyr10) 磷酸化钠钾ATP酶蛋白a1抗体300 ul
实验过程：
一、试剂准备
1. DNA模板
2．对应目的基因的特异引物（在PCR反应中，新合成的DNA是要接在一小段序列上才能继续按照模板DNA复制，而不能从无到有，凭空合成。这一小段序列就是你所要有设计的引物。可以是DNA也可以是RNA，一般20多bp，需要根据你的模板链设计。因此，扩增不同的基因需要设计不同的引物）
3．10×PCR Buffer
4．2mM dNTPmix：含dATP、dCTP、dGTP、dTTP各2mM
5．Taq酶
二、操作步骤
1．在冰浴中，按以下次序将各成分加入一无菌0.5ml离心管中。
10×PCR buffer 5μl
dNTP mixl 4μl
引物1（10pM） 2μl
引物2（10PM） 2μ
Taq酶（2U/μl） 1μl
DNA模板（50ng-1μg/μl） 1 μl
加ddH2O至 50 μl
视PCR仪有无热盖，不加或添加石蜡油。
2．调整好反应程序。将上述混合液稍加离心，立即置PCR仪上，执行扩增。一般：在93℃预变性3-5min，进入循环扩增阶段：93℃ 40s → 58℃ 30s → 72℃ 60s，循环30-35次，后在72℃ 保温7min。
3．结束反应，PCR产物放置于4℃待电泳检测或-20℃长期保存。
4．PCR的电泳检测：如在反应管中加有石蜡油，需用100μlLuFang进行抽提反应混合液，以除去石蜡油；否则，直接取5-10μl电泳检测
三、注意事项
１．PCR反应应该在一个没有DNA污染的干净环境中进行。好设立一个的PCR实验室。
２．纯化模板所选用的方法对污染的风险有影响。一般而言，只要能够得到可靠的结果，纯化的方法越简单越好。
３．产品仅用于科研所有试剂都应该没有核酸和核酸酶的污染。操作过程中均应戴手套。 |
